服務(wù)熱線
產(chǎn)品展示PRODUCTS
RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x（植物領(lǐng)域）
更新時(shí)間：2024-08-27
訪問(wèn)次數(shù)：327
RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x由德國(guó)PyroScience公司聯(lián)合歐洲多國(guó)科學(xué)家研制生產(chǎn)，基于REDFLASH（RF）光學(xué)傳感器技術(shù)，操作簡(jiǎn)單，無(wú)需維護(hù)。氧氣測(cè)量?jī)x由主機(jī)、傳感器及軟件組成，應(yīng)用于環(huán)境科學(xué)、生態(tài)科學(xué)、植物科學(xué)、動(dòng)物科學(xué)、海洋科學(xué)、生物醫(yī)學(xué)、生物技術(shù)、食品科學(xué)等各個(gè)領(lǐng)域。在植物領(lǐng)域，RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量?jī)x廣泛用于測(cè)量高等植物器官（葉、根、莖、種子）的呼吸代謝及藻類的光合放氧。
| 品牌 | PyroScience | 產(chǎn)地類別 | 進(jìn)口 |
|---|---|---|---|
| 應(yīng)用領(lǐng)域 | 環(huán)保,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)業(yè),綜合 |
RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量儀由德國(guó)PyroScience公司聯(lián)合歐洲多國(guó)科學(xué)家研制生產(chǎn)，基于REDFLASH（RF）光學(xué)傳感器技術(shù)，操作簡(jiǎn)單，無(wú)需維護(hù)。氧氣測(cè)量儀由主機(jī)、傳感器及軟件組成，應(yīng)用于環(huán)境科學(xué)、生態(tài)科學(xué)、植物科學(xué)、動(dòng)物科學(xué)、海洋科學(xué)、生物醫(yī)學(xué)、生物技術(shù)、食品科學(xué)等各個(gè)領(lǐng)域。在植物領(lǐng)域，RF-O2熒光光纖氧氣測(cè)量儀廣泛用于測(cè)量高等植物器官（葉、根、莖、種子）的呼吸代謝及藻類的光合放氧。
功能特點(diǎn)
l REDFLASH技術(shù)無(wú)氧耗、高速響應(yīng)、低電耗、高精度、低交叉敏感性、低干擾
l 氧氣傳感器類型靈活多樣，包括探頭、探針、插入式、裸光纖、耐溶劑等接觸式傳感器以及薄膜貼、流通管、呼吸瓶等非接觸傳感器
l 氧氣測(cè)量范圍全量程和痕量可選
l 測(cè)量?jī)x小巧緊湊、電腦USB供電，無(wú)需額外電源
l 氧氣測(cè)量1、2、4通道可選
l 具備實(shí)時(shí)溫度補(bǔ)償
l 高時(shí)空解析度
l 氣體、液體樣品均可使用
l 具模擬輸出和廣播模式
l 配套分析軟件具備耗氧率計(jì)算和漂移補(bǔ)償?shù)墓δ?/span>
l 即插即用
l 輕松校準(zhǔn)
應(yīng)用方向
l 根系、下胚軸、花芽、種子等植物組織器官耗氧率的測(cè)量
l 特殊植物組織（如冠癭）的呼吸代謝測(cè)量
l 藻類光合放氧和凈光合速率的測(cè)定
技術(shù)指標(biāo)
1) 新一代FireSting-O2（FS-O2）測(cè)量?jī)x：
a) 有1通道、2通道、4通道可供選配，分別可接1個(gè)、2個(gè)或4個(gè)氧氣或溫度傳感器；另具備一個(gè)Pt100熱電阻溫度傳感器通道
b) 最大采樣頻率：每秒10-20次
c) 內(nèi)置氣壓傳感器，300－1100mbar，0.06mbar分辨率，精確度±3mbar
d) 內(nèi)置濕度傳感器，0－100%RH，分辨率0.04%，精確度±0.2%
e) 具模擬輸出和自動(dòng)模式，0－2.5VDC
f) USB2.0接口，通過(guò)USB口PC供電，20mA@5VDC
g) 端口：串行接口UART
h) 大?。?/span>78x120x24mm，重290g
i) 操作環(huán)境：0-50℃，非冷凝
j) 軟件：Pyro Workbench，Windows7/8/10，配置700MB硬盤、1GB內(nèi)存、1360×768屏幕分辨率
2) 全量程氧氣測(cè)量參數(shù)
最佳測(cè)量范圍 0-50%O2（氣相），0-22mg/L（溶解氧）
最大測(cè)量范圍0-100%O2（氣相），0-44mg/L（溶解氧）
檢測(cè)極限：0.02%O2（氣相），0.01mg/L（溶解氧）
適用溫度范圍：0-50℃
3) 痕量氧氣傳感器測(cè)量參數(shù)
最佳測(cè)量范圍 0-10%O2（氣相），0-4.5mg/L（溶解氧）
最大測(cè)量范圍 0-21%O2（氣相），0-9mg/L（溶解氧）
檢測(cè)極限：0.005%O2（氣相），0.002mg/L（溶解氧）
適用溫度范圍：0-50℃
4) 氧氣校準(zhǔn)膠囊：用于氧氣傳感器的零點(diǎn)校準(zhǔn)。每個(gè)膠囊可制備50mL的校準(zhǔn)溶液，10個(gè)裝。
5) 配套數(shù)據(jù)采集和展示軟件Pyro Workbench：支持多達(dá)10個(gè)Pyro的測(cè)量設(shè)備同時(shí)運(yùn)行。軟件提供設(shè)備的設(shè)置和傳感器的校準(zhǔn)。傳感器讀數(shù)能以數(shù)字和圖表的形式展示，并能以相應(yīng)數(shù)據(jù)文件存儲(chǔ)，便于進(jìn)一步的數(shù)據(jù)分析。
6) 配套分析軟件Pyro Data Inspector：提供耗氧率計(jì)算和漂移補(bǔ)償?shù)葦?shù)據(jù)分析的功能。
7) 傳感器：類型多樣，包括探頭傳感器、探針傳感器、插入式傳感器、裸光纖傳感器、耐溶劑傳感器、薄膜貼、流通管、呼吸瓶等。
應(yīng)用案例
1. 德國(guó)亞琛工業(yè)大學(xué)使用FSO2測(cè)量?jī)x、伸縮探針式氧氣傳感器和呼吸瓶式傳感器分別對(duì)擬南芥冠癭組織（致瘤農(nóng)桿菌侵染引起）的耗氧率及組織內(nèi)部氧氣變化進(jìn)行原位監(jiān)測(cè)和離體測(cè)量（右圖）。論文發(fā)表于2019年《Frontiers in Plant Science》雜志。
2. Mignolli等人研究發(fā)現(xiàn)部分水淹會(huì)顯著抑制番茄根系的呼吸和生長(zhǎng)，卻會(huì)增加下胚軸的氧氣消耗。
研究小組使用FSO2氧氣測(cè)量?jī)x、伸縮式探針傳感器和呼吸瓶進(jìn)行了耗氧率的測(cè)量。論文發(fā)表于2021年《Plant, Cell & Environment》雜志。
3. 英國(guó)海洋生物協(xié)會(huì)和美國(guó)北卡萊羅納大學(xué)威明頓分校聯(lián)合研究破壞鈣化作用對(duì)顆石藻生長(zhǎng)的影響，分別使用了AquaPen藻類葉綠素?zé)晒鈨x和FSO2呼吸瓶分別測(cè)量了其最大光化學(xué)效率（Fv/Fm）和凈光合速率。論文發(fā)表于2018年《New Phytologist》雜志。
4. Ouada等人研究發(fā)現(xiàn)高耐受性和高移除率使嗜堿性綠藻Picocystis在有機(jī)污染物雙酚A（BPA）的水質(zhì)凈化方面具有巨大的潛力。研究小組使用AquaPen藻類葉綠素?zé)晒鈨x和FSO2呼吸瓶分別測(cè)量了暴露于不同濃度雙酚A的Picocystis凈光合速率和PSII最大光化學(xué)效率在5天中的變化。論文發(fā)表于2018年《Ecotoxicology and Environmental Safety》雜志。
5. 芬蘭土爾庫(kù)大學(xué)使用FSO2單通道測(cè)量?jī)x和裸光纖式氧氣傳感器測(cè)量南瓜葉綠體類囊體的光合放氧。
近年部分參考文獻(xiàn)
l Tanaka, K., Kishi, M., Assaye, H. & Toda, T. Low temperatures in dark period affect biomass productivity of a cyanobacterium Arthrospira platensis. Algal Research 52, 102132 (2020).
l Sheehan, C. E., Nielsen, D. A. & Petrou, K. Macromolecular composition, productivity and dimethylsulfoniopropionate in Antarctic pelagic and sympagic microalgal communities. Marine Ecology Progress Series 640, 45–61 (2020).
l Karemore, A., Yuan, Y., Porubsky, W. & Chance, R. Biomass and pigment production for Arthrospira platensis via semi-continuous cultiv ation in photobioreactors: Temperature effects. Biotechnology and Bioengineering 117, 3081–3093 (2020).
l Galès, A. et al. Control of the pH for marine microalgae polycultures: A key point for CO2 fixation improvement in intensive cultures. Journal of CO2 Utilization 38, 187–193 (2020).
l Kazbar, A. et al. Effect of dissolved oxygen concentration on microalgal culture in photobioreactors. Algal Research 39, 101432 (2019).
l Heydarizadeh, P. et al. Carbon Orientation in the Diatom Phaeodactylum tricornutum: The Effects of Carbon Limitation and Photon Flux Density. Front. Plant Sci. 10, (2019).
l Harvey, B. P., Agostini, S., Kon, K., Wada, S. & Hall-Spencer, J. M. Diatoms Dominate and Alter Marine Food-Webs When CO2 Rises. Diversity 11, 242 (2019).
l Chu, Y., Liu, Y., Li, J. & Gong, Q. Effects of elevated pCO2 and nutrient enrichment on the growth, photosynthesis, and biochemical compositions of the brown alga Saccharina japonica (Laminariaceae, Phaeophyta). PeerJ 7, e8040 (2019).
l Walker, C. E. et al. The requirement for calcification differs between ecologically important coccolithophore species. New Phytologist 220, 147–162 (2018).
l Ben Ouada, S., Ben Ali, R., Leboulanger, C., Ben Ouada, H. & Sayadi, S. Effect of Bisphenol A on the extremophilic microalgal strain Picocystis sp. (Chlorophyta) and its high BPA removal ability. Ecotoxicology and Environmental Safety 158, 1–8 (2018).